L' examen coproparasitoscópico és un estudi de laboratori en el qual s'examina la matèria fecal (excrements) amb l'objecte de detectar paràsits intestinals. És una de les tècniques de laboratori més senzilla i antiga, sent desenvolupada inicialment per Anton Van Leeuwenhoek al segle XVIII.
Anton Van Leeuwenhoek, considerat el pare de la microbiologia, va utilitzar el mètode coproparasitoscópico "directe" per observar la seva pròpia femta i va descriure el que anys després va ser identificat com els trofozoïts de Giardia lamblia, un protozoario que envaeix l'intestí prim de l'home.
Forma adulta d'Ascaris lumbricoides (Font: Wikimedia Commons)
Les malalties parasitàries afecten a milions de persones al món, sobretot als països pobres o poc desenvolupats, on hi ha condicions sanitàries deficients relacionades amb la disposició d'excretes i el consum d'aigües contaminades.
El diagnòstic d'aquestes malalties és important per a un tractament adequat, sent l'examen coproparasitoscópico és una eina indispensable per al mateix. És un examen de laboratori senzill, ràpid i econòmic.
L'examen coproparasitoscópico inclou diverses tècniques que, a més de permetre la visualització directa i la quantificació d'ous, trofozoïts, quists o larves, permet identificar les estructures de l'microorganisme i així identificar el paràsit.
Entre les tècniques utilitzades per a l'examen coproparasitoscópico es troben les tècniques de tinció amb blau de metilè, els mètodes de concentració, la tècnica de Faust, Richie, les tècniques de sedimentació i els exàmens directes, únics o seriats.
Ou no fecundat de Ascaris lumbricoides. (Font: Centers for Disease Control and Prevention, via Wikimedia Commons).
Presa de mostra
Per realitzar aquest estudi es requereix que el pacient prengui una mostra fresca de femtes que no estigui contaminada amb orina, aigua, sang (menstrual) o terra. La mostra ha de ser de la mida d'una nou o, en cas de ser líquida, ha de ser, com a mínim, de l'volum corresponent a dos cullerades.
El pacient no ha d'haver pres medicaments parasiticides almenys en els tres dies previs a la presa de la mostra o pel període que li indiqui el seu metge. Tampoc ha d'usar medicaments laxants.
Les mostres s'han de col·locar en un recipient sec, de boca ampla i amb tapa o en un recipient d'un sol ús dissenyat per a tal fi (que pot obtenir-se a la farmàcia de la seva preferència). Les mostres han de col·locar-se en un ambient fresc, no han de ser refrigerades per més de 24 hores i no poden conservar prop de fonts tèrmiques ni congelar-se.
Quan l'examen indicat és seriat, es requereix d'almenys tres mostres, les quals s'han de prendre cada 24 hores o més, segons ho indiqui el metge. Per a aquests casos, els laboratoris generalment proveeixen d'un set de flascons que contenen unes solucions amb conservadors.
Quan en la deposició el pacient observa algun "cuc", de ser possible, haurà col·locar-lo en un pot tancat amb aigua i portar-lo a laboratori juntament amb el pot de la mostra de femta.
Els flascons amb les mostres o amb els "cucs" han de ser etiquetats i identificats amb el nom de pacient, la seva edat, sexe i la data i hora de la presa de mostra.
És molt important instruir adequadament el pacient sobre tots aquests aspectes de la presa i el maneig de les mostres, ja que d'això depèn que els elements que puguin existir en aquesta mostra es mantinguin viables per a la seva observació, identificació i diagnòstic.
tècniques
Hi exàmens coproparasitoscópicos directes i tècniques de suspensió i concentració de les mostres que s'utilitzen moltes vegades per evitar falsos negatius i observar mostres molt més netes. També es fan servir algunes tècniques de tinció per a la identificació de certs paràsits.
exàmens directes
L'examen coproparasitoscópico directe, per la tècnica de la gota pendent, consisteix a fer una dilució de la mostra de femta amb solució fisiològica (ClNa a l'0,9%) i col·locar una gota d'aquesta solució en una concavitat que posseeix un portaobjectes especial usat per a tal fi.
Un cop col·locada la gota al portaobjectes es cobreix amb un cobreobjectes i s'observa al microscopi. Aquesta tècnica permet observar ous i quists, però també permet observar qualsevol element mòbil com flagel·lats, larves, trofozoïts, ciliats, etc.
Tècniques de suspensió i concentració
Les tècniques de suspensió utilitzen una solució més densa que els elements que es volen observar, de manera que aquests suren a la superfície de el líquid i poden colectarse, ja que queden concentrats a la capa superficial de la solució.
Aquesta tècnica té l'avantatge que permet tenir una mostra prou neta de detritus, ja que aquests, a l'ésser més densos, queden al fons de l'flascó. El desavantatge relativa és que la solució encongeix i deforma els microorganismes en poc temps.
Aquests mètodes no s'usen per a ous d'helmints i cestodes perquè són molt pesats i no suren en aquestes solucions. Són molt utilitzats per observar protozoaris en la seva forma tropozoitica o els seus ous i per a l'observació de larves com, per exemple, les de Strongyloides stercoralis.
Una altra tècnica molt utilitzada per no deformar els microorganismes de la mostra i ser senzilla i econòmica és la tècnica de sedimentació amb formalina.
Entre les tècniques de concentració es pot citar com a exemple a les tècniques de Faust i de Richie.
Les diferents tècniques que permeten la visualització microscòpica dels ous, larves o altres elements dels diferents paràsits intestinals, combinades amb les tècniques de tinció, permeten la identificació i el diagnòstic d'aquestes malalties.
exemples
A continuació, es descriu un cas clínic i es mostren unes imatges que permeten il·lustrar la utilitat de l'examen coproparasitoscópico per al diagnòstic i l'avaluació dels beneficis de l'tractament.
Ou de Trichuris trichuria (Font: CDC / Dr. Mae Melvin, Courtesy Public Health Image Library via Wikimedia Commons)
Un pacient masculí de 18 anys va a la consulta mèdica per presentar dolor abdominal tipus còlic, més intens a la zona periumbilical, nàusees i episodis de diarrea aquosa.
A l'interrogar el pacient, el metge nota dos punts resaltantes: 1) el pacient refereix haver-se banyat en un llac d'una zona rural i 2) li crida l'atenció que els seus excrements suren al vàter. Després d'examinar a l'pacient, el metge sospita la presència de Giardia lamblia.
Cicle de vida de Giardia lamblia (Font: LadyofHats via Wikimedia Commons)
Aquest protozoari s'allotja a l'intestí prim de l'home i interfereix amb l'absorció dels greixos, el que genera excrements molt greixoses que tendeixen a surar. La contaminació freqüentment ocorre per aigües contaminades en llacs o rierols en zones rurals o en piscines o jacuzzis amb pobre manteniment.
Trofozoïts de Giardia lamblia (Font: Photo by Eva Nohýnková, Department of Tropical Medicine, 1st Faculty of Medicine, Charles University in Prague and Hospital Bulovka, Czech Republic. Image in paper by Casa Lipoldova, Laboratory of Molecular and Cellular Immunology, Institute of Molecular Genetics, Academy of Sciences of the Czech Republic, Prague, Czech Republic via Wikimedia Commons)
El metge indica un examen coproparasitoscópico i els resultats confirmen la presència de Giardia lamblia. Després de finalitzat el tractament s'indica un altre examen coproparasitoscópico que confirma l'absència de quists o trofozoïts de Giardia lamblia.
referències
- Buonfrate, D., Mena, MA, Angheben, A., Requena-Mendez, A., Muñoz, J., Gobbi, F.,… & COHEMI Project Study Group. (2015). Prevalence of strongyloidiasis in Latin America: a systematic review of the literature. Epidemiology & Infection, 143 (3), 452-460.
- d'Haro Arteaga, I., & Ruiz, AEC (2014). Diagnòstic de. Parasitologia mèdica (4a, 347.
- Mendoza, D., Nunez, FA, Escobedo, AA, Pelayo, L., Fernandez, M., Torres, D., & Cordovi, RA (2003). Usefulness of 2 coproparasitological methods and their utilization in an antigiardiasis therapeutic trial. Revista cubana de medicina tropical, 55 (3), 174-178.
- Price, -DL (2017). Procedure manual for the diagnosi of intestinal Parasites. CRC Press.
- Sahin, I., Kiliç, H., Ozcan, M., & Orhan, R. (1984). A copro-parasitological study on the wrestlers of the national team. Mikrobiyoloji bülteni, 18 (2), 114-118.